BacterPlate™ Mueller Hinton Agar (MHA)

HƯỚNG DẪN SỬ DỤNG

• Kiểm tra độ nhạy kháng sinh (phương pháp Kirby & Bauer tiêu chuẩn):
• Sử dụng chủng thuần chủng từ Tryptone soy broth (TSB) có độ mờ tương đương với độ mờ tiêu chuẩn của huyền phù bari sulfat (mật độ 0,5 trên thang MacFarland).
• Lấy mẫu cấy bằng tăm bông vô trùng.
• Cấy vào thạch. Quét miếng gạc 2 đến 3 lần trên toàn bộ bề mặt thạch để thu được chất cấy đồng nhất.
• Để các đĩa khô trong 10 phút trước khi đặt đĩa vào.
• Đặt các đĩa với áp lực nhẹ để đảm bảo độ bám dính tốt với thạch. Chúng phải được đặt cách mép đĩa ít nhất 15 mm và cách nhau đủ xa để các vùng ức chế không chồng lên nhau.
• Ủ ở 37°C trong 18 đến 24 giờ.

LƯU Ý:

Phương pháp Kirby và Bauer được công nhận là mang lại kết quả đáng tin cậy nhất và có khả năng tái tạo cao nhất. Tuy nhiên, các phương pháp khác cũng có thể được sử dụng với điều kiện là chất cấy và phương pháp cấy được nghiên cứu và tiêu chuẩn hóa trước tiên.

 ĐỌC KẾT QUẢ

• Sau khi ủ theo thời gian yêu cầu, quan sát khuẩn lạc phát triển trên bề mặt đĩa và các vòng ức chế tròn, đồng nhất xung quanh các khoanh kháng sinh. Đo vùng ức chế
• Để định danh của vi khuẩn phân lập được phải được tiến hành tiếp theo bởi các test thích hợp. Nếu các khuẩn lạc riêng rẽ còn xuất hiện thì cần phải thực hiện kiểm tra lại.
• Lật ngược đĩa lại, giơ trước ánh sáng, nhìn vào mặt đáy của đĩa, sử dụng thước kẹp chia vạch tới milimet để đo đường kính các vòng ức chế hoàn chỉnh (bao gồm cả khoanh kháng sinh). Đường viền của vòng ức chế nên được đọc từ khu vực mà không phát hiện được sự phát triển của vi khuẩn bằng mắt thường. Các vi khuẩn có khuẩn lạc mờ nhạt hoặc khuẩn lạc bé tại viền của vòng ức chế sinh trưởng chỉ có thể nhìn được khi phóng đại thì nên bỏ qua.
• Để giải thích cho vùng ức chế, tham khảo CLSI M100 cho mỗi chủng vi sinh vật.